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1,跑电泳时3VCM电压为多少伏

每厘米(cm)3V,2cm就是6V,10cm就是30V...

跑电泳时3VCM电压为多少伏

2,7Vcm电泳多大电压

那要看你的电泳槽中两条条电极的距离有多远。自己去量一下吧,结果乘以7就是电压。

7Vcm电泳多大电压

3,在LED电源中9V320MR16其中MR指什么刚做LED不懂在百度上

MR16是一种命名编号,其中「MR」是代表多重反射罩(Multifaceted Reflector)。 16是代表前直径的长度,为多少单位长的倍数,规定8个单位长为1英吋。以MR16为例,前直径是16个单位长,则前直径是2英吋,即2x2.54cm =5.08cm,口径约长5公分

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4,血浆脂蛋白分子由大到小排列

D.HDL→VLDL→LnL→CM电泳法,是指带电荷的供试品(蛋白质、核苷酸等)在惰性支持介质(如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等)中,于电场的作用下,向其对应的电极方向按各自的速度进行泳动,使组分分离成狭窄的区带,用适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其含量(%)的方法。
没看懂什么意思?

5,电泳Vcm什么意思

v/cm :就是每厘米的电压值,即匀强电场中的电场强度。公式表示为,匀强电场场强公式:E = U/d 场强的国际标准单位是:伏/米因此,换算成电压就是:U = E*d d:表示电泳槽中正负极之间的垂直距离,一般就是电泳槽的长度。楼主,请见这个:http://wenwen.sogou.com/z/q817785260.htm
电场强度单位,跟电流无关就是2个相距1cm的平行电极之间电压10v

6,voltscm 什么意思

你好!在5V的电压下跑的距离不用调电流,把电压调到所要求的就可以 (仅供参考)希望对你有所帮助,望采纳。
在5V的电压下跑的距离不用调电流,把电压调到所要求的就可以 (仅供参考)
volts/cm :就是每厘米的电压值,即匀强电场中的电场强度。公式表示为,匀强电场场强公式:E = U/d 场强的国际标准单位是:伏/米因此,换算成电压就是:U = E*d d:表示电泳槽中正负极之间的垂直距离,一般就是电泳槽的长度。所以,5volts/cm 的话,那么你就拿5去乘以你要用的那个电泳槽的长度(cm为单位),就知道你该将电泳仪调到多大的电压了。比如,我们实验室,一般用的电泳槽长40cm ,那么需要调的工作电压就是5*40 = 200 伏希望我的回答能够解答楼主的疑惑。

7,什么是琼脂糖电泳的其基本知识及操作方法是什么不同形态的DNA

以琼脂糖凝胶作为支持介质的电泳称为琼脂糖凝胶电泳。 二、琼脂糖凝胶电泳的准备和操作方法 1 、制备琼脂糖凝胶时注意避免产生气泡 凝胶电泳分为垂直型和水平型,一般垂直型分离效果好于水平型。但水平型可制备低浓度琼脂糖,制胶和加样比较方便,且电泳槽制作简单、价格低廉。   用缓冲液配制所需浓度的琼脂糖凝胶,水浴或微波炉中加热使琼脂糖完全融化,将溶液冷至 55 ℃ ,用少量琼脂糖凝胶将玻璃板或有机玻璃板封边,放置样品梳(梳齿下端离玻璃板 0.5 -1.0mm )。接着将融化的琼脂糖凝胶溶液不间断地倒在玻璃板上或有机玻璃板模子中(厚度依样品浓度而定,须注意避免气泡混入) , 室温下自然凝固。待完全凝固后小心取出加样器,在电泳槽中加入适量电泳缓冲液,使胶板浸没在电泳缓冲液下约 1mm 处。 2 、样品制备与加样 所加样品应有适当浓度与较小体积,用微量注射器缓慢加入样品,点样时电源必须处于关闭状态。为了指示电泳的距离,避免样品在电泳槽缓冲液中飘浮,常在制备好的样品中加入含有蔗糖或甘油以及指示剂(溴酚蓝、二甲苯青等)的上样缓冲液。另外,样品中含盐量不能太高,否则电泳中会出现区带消失、前沿不齐等现象。样品中 DNA 含量以每条区带的 DNA 不少于 0.1 μ g 为宜, DNA 浓度过高会使电泳区带变宽,泳动距离异常。 样品的用量由加样孔的体积决定,通常为 10-50 μ g 。 3 、电泳 电泳温度视需要而定。对于大分子的分离,宜低温,电压应低(一般不超过 5V/cm )。普通电泳可在室温进行,电泳的电压为 5-15V/cm 。 4 、染色-以 DNA 电泳为例 常用荧光染料溴化乙锭( EB )进行染色以观察在琼脂糖凝胶中的 DNA 条带。 EB 能插入 DNA 分子中碱基对之间,使 EB 与 DNA 结合(超螺旋 DNA 与 EB 结合能力小于双链闭环,而双链闭环的 DNA 与 EB 结合能力小于线状双链 DNA )。将以染色的凝胶浸泡在 1mmol/lMgSO 4 溶液中 1 小时,可以降低未结合的 EB 所引起的背景荧光,以提高检测的灵敏度。 琼脂糖凝胶电泳对核酸的分离作用主要是依据它们的相对分子量质量及分子构型,同时与凝胶的浓度也有密切关系。 1、核酸分子大小与琼脂糖浓度的关系 (1)DNA分子的大小 在凝胶中,DNA片段迁移距离(迁移率)与碱基对的对数成反比,因此通过已知大小的标准物移动的距离与未知片段的移动距离时行比较,便可测出未知片段的大小。但是当DNA分子大小超过20kb时,普通琼脂糖凝胶就很难将它们分开。此时电泳的迁移率不再依赖于分子大小,因此,就用琼脂糖凝胶电泳分离DNA时,分子大小不宜超过此值。 (2)琼脂脂糖的浓度 如下表所示,不同大小的DNA需要用不同浓度的琼脂糖凝胶进行电泳分离。 表 琼脂糖浓度与DNA分离范围 琼脂糖浓度 /% 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0 线状DNA大小/kb 60-5 20-1 10-0.8 7-0.5 6-0.4 4-0.2 3-0.1 2、核酸构型与琼脂糖凝胶电泳分离的关系 不同构型DNA的移动速度次序为:供价闭环DNA(covalently closed circular,cccDNA)>直线DNA>开环的双链环状DNA。当琼脂糖浓度太高时,环状DNA(一般为球形)不能进入胶中,相对迁移率为0(Rm=0),而同等大小的直线双链DNA(刚性棒状)则可以长轴方向前进(Rm>0),由此可见,这三种构型的相对迁移率主要取决于凝胶浓度,但同时,也受到电流强度、缓冲液离子强度等的影响。
电泳就是带电粒子在电场环境中涌动 琼脂糖凝胶电泳 就是琼脂糖为载体(在这胶板上跑) 当然用缓冲液 就像是一个鱼缸放一层浆糊(这里是琼脂糖凝胶) 再在浆糊一端有整齐在同一线上的小长方形的洞 加样通电 里面的物质带电荷 (同性相斥 异性相吸) 在电场力的作用下当然向与自身相反电荷的电极方向移动
琼脂糖凝胶电泳,是用琼脂粉配的胶,浓度通常在 0.5 ~ 2 %之间,并在TAE溶液中,进行的电泳,低浓度的用来进行大片段核酸的电泳,高浓度的用来进行小片段分析。 操作方法:选择合适的浓度,我们一般用0.2g的琼脂粉,加20mlTAE,在微波炉溶胶。加入少许EB,然后倒入胶板,插上梳子,冷却凝固后,就可以拔掉梳子,取出放入电泳槽中,点样,电泳。 一般琼脂糖电泳只是用来分辨DNA的大小,分子量越大的,跑得越慢(靠近点样孔),分子量越小的跑得越快(远离点样孔)。 形态方面:区分三种质粒(分子量一样大):超螺旋跑得最快,线性居中,开环跑得最慢。
DNA电泳一般使用的都是琼脂糖凝胶电泳,电泳的驱动力靠DNA骨架本身的负电荷。 蛋白质电泳(一般指SDS-PAGE)一般使用的都是聚丙烯酰胺凝胶电泳,电泳的驱动力靠与蛋白质结合的SDS上所携带的负电荷。 所以相同点就是样品都是带负电荷的,从负极向正极移动,移动的距离都和样品的分子量有关。而且这两个电泳体系可以互相交换使用。进行大分子蛋白质电泳时,可以考虑换用琼脂糖凝胶,因为该体系孔径大。相反,如果需要精确到各位数碱基的DNA电泳也可以使用聚丙烯酰胺凝胶系统,因为使用该系统可以将相差一个碱基的两条DNA链分开。 不同点首先是样品不同。这个就不用多说了。其次是结果的观察方法不同。DNA电泳普遍使用EB做染料,在紫外灯下观察;而蛋白电泳使用的考马斯亮蓝染色,还需要经过脱色步骤,不过观察起来比较简单。还有就是胶体系的差别,DNA电泳通常是一胶跑到底,而蛋白质电泳则会有分离胶和浓缩胶之区别。 电泳中样品移动的本质确实是样品所携带的电荷。但是,区分这些条带直接可以用分子量而无需使用电荷数,是因为这些样品的电荷/分子量比都是恒定的了。以DNA分子为例,它在电泳中的移动是靠其骨架中磷酸所携带的负电荷来实现的,而这个磷酸分子又是每一个核苷酸中都有的,所以DNA分子所携带的负电荷数是由其核苷酸总数决定的。而且,DNA分子中核苷酸的组成动辄成百上千,在如此大的分子量面前,讨论单个核苷酸之间分子量的差别就显得毫无意义。这样,DNA分子中负电荷的量就可以用DNA的分子量来代替,反过来,DNA的分子量也就可以用DNA分子所携带的电荷来代替(一句话,DNA分子的电荷/分子量比是恒定的)。 这在蛋白电泳中(特别是SDS-PAGE中)是一样的。在SDS-PAGE中,SDS将蛋白质变性成直线分子并紧密包裹于其上,使得其所携带的电荷与蛋白分子量成了一定的比例,剩下的就和核酸电泳一样了。

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